1、培養(yǎng)目的：　神經(jīng)細胞原代培養(yǎng)是研究神經(jīng)組織形態(tài)結構和功能及其在缺血缺氧等各種損傷條件下的病理變化的重要方法之一。希望通過較簡單的實驗方法能較容易地培養(yǎng)出生長狀態(tài)良好的神經(jīng)細胞,為研究大腦皮層神經(jīng)細胞的生物學特點及各種與神經(jīng)細胞相關的實驗研究提供較好的體外模型。
2、實驗室條件：
超凈工作臺、培養(yǎng)箱、倒置顯微鏡、冰箱、冷凍保存裝置、細胞計數(shù)板和電子細胞計數(shù)儀、離心機、PH計、天平、水純化裝置、高壓蒸汽消毒裝置、電熱干燥箱、過濾除菌裝置、手術器械、培養(yǎng)器皿、移液器、特殊用具、雜用品
3、培養(yǎng)方法：
   1）培養(yǎng)基的選用（含應補充的附加成分）及培養(yǎng)所需的其它用液；
10 %馬血清DMEM培養(yǎng)液（含90 %DMEM 液,10 %馬血清）, 10 %馬血清,含終濃度為3～6 mmol/ L 的HEPES ,添加終濃度為6. 25 mmol/ L 的NaCl ;Neurobasal 培養(yǎng)液中含98 %Neu2robasal 液,2 % B27 添加劑,含終濃度為3～6 mmol/ L 的HEPES ,添加終濃度為6. 25 mmol/ L 的NaCl 。DHanks 液(除常規(guī)配方外,添加終濃度為6. 25 mmol/ L 的NaCl)
2）具體操作方法及步驟（按實際操作分步列出）；
1 新生24 h 內大鼠置- 20 ℃冷凍10 min ,于無菌條件下取出兩大腦半球,置于盛有4 ℃DHanks 液(除常規(guī)配方外,添加終濃度為6. 25 mmol/ L 的NaCl) 的平皿中,在顯微解剖鏡下徹底剝去腦膜、血管,去除腦白質,取大腦皮層并用DHanks 液漂洗兩遍,將皮層剪碎成1 mm³ 小塊(冰上操作)
2 在37℃條件下用0. 125 %胰蛋白酶消化20 min ,中間振搖1～2 次。
3 消化完全后用等體積的4℃ 10 %馬血清DMEM 培養(yǎng)液終止消化并漂洗兩遍,將細胞團塊轉入另一無菌離心管中,加入適量的4℃10 %馬血清DMEM 培養(yǎng)液后用長嘴巴氏吸管吹打數(shù)次(注意盡量不產(chǎn)生氣泡) ,靜置5min 后收集上層細胞懸液,重復上述步驟兩次。
4 將細胞懸液過70μm Zellsieb 網(wǎng)篩后,以1000 rpm 速度,離心5 min ,棄上清,
5 用10 %馬血清DMEM 培養(yǎng)液重懸細胞并調整密度**5 ×105 個/ ml ,接種細胞于預先涂布有0. 1 ‰多聚賴氨酸(Sigma) 的培養(yǎng)板(6 、24 孔板每孔分別接種2. 0 ml 、0. 4 ml)內,
6 于37℃、飽和濕度5 %CO2 培養(yǎng)箱內進行培養(yǎng),4h 后用含2 %B27 的Neurobasal 培養(yǎng)液給細胞全量換液(6 、24 孔板每孔分別1. 0 ml 、0. 3 ml) ,以后每3 d 半量換液1 次。
7 神經(jīng)細胞接種1h 后即有細胞貼壁,培養(yǎng)4h 后jue大部分細胞已貼壁,并可觀察到有相當數(shù)量的細胞長出突起,胞體透亮,光澤明顯,細胞活性好,此時將細胞從有血清培養(yǎng)環(huán)境換成Neurobasal 無血清培養(yǎng)環(huán)境繼續(xù)培養(yǎng)
3）培養(yǎng)過程的觀察的注意事項；
①實驗動物為新生24 h 內大鼠,而可不用胎鼠
②接種細胞后用10 %馬血清DMEM 培養(yǎng)液培養(yǎng)4 h ,之后用Neurobasal 全量更換培養(yǎng)液繼續(xù)培養(yǎng), 要增加神經(jīng)細胞貼壁生長能力,預先用多聚L - 賴氨酸處理培養(yǎng)板也是關鍵之一
③Neurobasal 培養(yǎng)液滲透壓為235 ( ±10)mosM ,多用作胎鼠大腦神經(jīng)細胞培養(yǎng),而用于成年大鼠神經(jīng)細胞培養(yǎng)的液體滲透壓約為260 mosM
④本方法培養(yǎng)神經(jīng)細胞,不需額外加入阿糖胞苷等抑制膠質細胞分裂的藥物,也能獲得較純的皮層神經(jīng)細胞,關鍵是剝離腦膜、血管、白質要徹底。
⑤培養(yǎng)板處理方法很重要:shou先應徹底清洗干凈,包括泡4 %硫酸清潔液及分析純級100 %乙醇;另外在培養(yǎng)孔內放置蓋玻片(蓋片處理基本同培養(yǎng)板,只是需泡含80 %濃硫酸的清潔液) ,再用多聚賴氨酸包被蓋玻片,使神經(jīng)細胞更好貼壁生長,提高培養(yǎng)效果。
⑥由于神經(jīng)細胞比較嬌嫩,制備單細胞懸液過程中要求操作輕、穩(wěn),吹打時忌產(chǎn)生氣泡。另外整個制備單細胞懸液過程在冰
上進行,能更好地保持細胞活力。
⑦整個實驗過程一定要無菌操作。
4、目的細胞的鑒定方法：
1）具體方法（可列1～3種）；大腦皮質神經(jīng)元純度的鑒定( Nissl’s 染色)
　　將細胞爬片的小玻片用0. 01 mol/ L 的PBS 漂洗,40 g/ L 多聚甲醛固定,再用10 g/ L 甲苯胺藍染色,梯度酒精(70 %、80 %、95 %、100 %) 分色,置倒置相差顯微鏡下,隨機觀察并計數(shù)30 個視野(目鏡10 ×,物鏡20 ×,框面積0. 3 mm2 ) 內的神經(jīng)細胞數(shù)。
2）應出現(xiàn)的結果：陽性；陰性。
　 培養(yǎng)第3 d 的神經(jīng)細胞,胞核淡染,偏于一側,胞體飽滿,藍紫色顆粒不均勻分布于胞漿中,同時可見胞核藍染、胞質淡染、平鋪于板底的非神經(jīng)元。經(jīng)Ara2C 作用24 h 后,**培養(yǎng)第6 d ,可見神經(jīng)細胞胞體增大,胞質內尼氏顆粒增多,非神經(jīng)細胞明顯減少,神經(jīng)元純度可達92 %以上,便可用于進一步試驗研究。
5、困難及解決辦法：
1）  獲得較純的皮層神經(jīng)細胞：熟悉大鼠的大腦局部解剖，剝離腦膜、血管、白質要徹底，操作過程中動作輕柔。
2）在實驗準備階段器清洗器械時要細致認真。若忽略培養(yǎng)瓶內的細小的雜質，可導致在培養(yǎng)過程中一些雜質也在瓶內生長
        3）自身專業(yè)技能不熟練，吹打是過多氣泡產(chǎn)生，無菌觀念不強等原因，在培養(yǎng)過程中導致細胞死亡。